明胶酶谱法.docx

上传人:lao****ou 文档编号:638520 上传时间:2024-03-13 格式:DOCX 页数:6 大小:21.10KB
下载 相关 举报
明胶酶谱法.docx_第1页
第1页 / 共6页
明胶酶谱法.docx_第2页
第2页 / 共6页
明胶酶谱法.docx_第3页
第3页 / 共6页
明胶酶谱法.docx_第4页
第4页 / 共6页
明胶酶谱法.docx_第5页
第5页 / 共6页
亲,该文档总共6页,到这儿已超出免费预览范围,如果喜欢就下载吧!
资源描述

《明胶酶谱法.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《明胶酶谱法.docx(6页珍藏版)》请在第一文库网上搜索。

1、明胶酶谱检测(Ge1atinZymography)明胶酶谱法(Zymography)是基于SDS-PAGE电泳和反相凝胶染色的蛋白酶检测方法来检测MMP-2、MMP-9活性,其灵敏度可达IOpg,高于E1ISA方法。其基本原理和程序是:以加有底物明胶的SDS-PAGE凝胶分离含蛋白酶的样品,电泳结束后取出凝胶与酶反应Buffer孵育,凝胶染色与脱色。凝胶中由于含底物明胶而被深染,形成深色背景,但在有蛋白酶条带的位置,蛋白酶将降解凝胶中的明胶蛋白,因而不被染色而形成白色条带,能同时指示MMP-2、MMP-9的位置(酶谱)。该方法具有如下特点:半定量分析MMPS活性,可区分酶原和活化型酶两种形式.

2、可检测样本有血液、渗出液、组织细胞提取物等。酶谱法的基本过程是先将样品进行SDS-聚丙烯酰胺(SDS-PAGE,含0.1%明胶)电泳分离,然后在有二价金属离子存在的缓冲系统中使样品中的MMP-2和MMP-9恢复活性,在各自的迁移位置水解凝胶里的明胶,最后用考马斯亮蓝将凝胶染色,再脱色,在蓝色背景下可出现白色条带,条带的强弱与MMP-2和MMP-9活性成正比。复性原理:在电泳过程中,SDS与样品中的MMPS结合(当然是可逆性结合),破坏其氢键、疏水键而使MMPS不能发挥其分解明胶的作用,而只有当将胶置Trition中洗脱(最好是放在摇床上摇,30min/次,做2次或15min次,4次。静置于Tr

3、itior1中是不妥的。)时,由于SDS被Trition结合而去除,从而使MMPs恢复了活性。试剂的配制(配方有可能是错的!)(1)配制10%SDS聚丙烯酰胺凝胶(含1Omg/m1明胶,配好后工周内使用,明胶含量低灵敏度高)A.分离胶的配制(注:根据你所用的电泳仪胶的大小确定配制胶的量)10%SDS聚丙烯酰胺凝胶IOmI(包括)ddH2O4.5m130%储备胶(0.8%BIS+292%丙烯酰胺)2m11.5mo11Tris(PH8.8)2.5m110%SDSIOOuI10%过硫酸镂(APS)IOOuITEMED8u11%明胶(Ig明胶-100m1,37。C水浴溶解)0.5m1B,浓缩胶的配制浓

4、缩胶6m1ddH204.5m130%储备胶0.75m11mo11Tris-HC1(PH6.8)0.76m110%SDS60u110%过硫酸镂60u1TEMED6u1(3) 5xTris-甘氨酸电极缓冲液0.125mo11Tris-HC1,1.25mo11甘氨酸,0.5%SDS(PH8.3)(4) 4X上样缓冲液0.32%Tris-HC16.4m14%SDS(PH7.2)8m116%甘油3.2m1澳酚蓝0.024gddH2O2.4m1(5)洗脱液25%TritonX-100,50mmo11Tris-HCI,5mmo11CaCI2,pH7.6(40分钟两次,中间换液)(6)漂洗液:50mmo11T

5、ris-HCI,5mmo11CaCI2,pH7.6(20分钟2次)(7)孵育液:50mmo1UriszpH7.5,150mmo11NaCI,10mmo11CaCI2z0.02%NaN3(孵育42小时)(8)染色液:0.05%Coomassic亮蓝R-250,30%甲醇,10%乙酸(染色3小时)(9)脱色液A、B、C:甲醇浓度分别为30%、20%、10%,乙酸浓度分别为10%、10%、5%(分别30mh1h2h脱色)实验步骤1取对数期的癌细胞在的无血清培养基DMEM中培养24ho2,次日收集上清液,将上清液移入离心管中200OrPm离心IOmin,70储存备用。3 根据细胞计数调整各组细胞培养上

6、清液中的蛋白浓度(或者测定蛋白浓度调整使所上蛋白总量一致)。与5x上样缓冲液混合,13U1样本+4u1上样缓冲液。(不要用枪用力吹打,防止出现过多气泡)4 .配制分离胶和浓缩胶,16u1孔上样(根据表达强度和蛋白浓度确定上样量),4进行SDS-PAGE电泳IOoV约1.5小时(电泳时在周围敷上冰,有利于使条带跑直)。5 .电泳结束后,将凝胶置于洗脱液(2.5%TritonX-100,50mmo11Tris-HCI,5mmo11CaCI2,pH7.6)中振荡洗脱2次,每次40分钟,然后用漂洗液(除不含TritonX-100外其余同洗脱液)漂洗2次,每次20分钟,接着,将凝胶置于孵育液(5Ommo

7、1/1Tris-HCI,5mmo1CaCI2,0.02%Brij-35zpH7.6)中37。孵育42k6 .孵育结束后经染色液(0.05%Coomassic亮蓝、30%甲醇、10%乙酸)染色3h,及脱色液A、B、C(甲醇浓度分别为30%、20%、10%,乙酸浓度分别为10%、10%、5%)分别脱色0.5、1、2h后,显示出MMP-2(72KD)和MMP-9(92KD)为位于蓝色背景上的透亮带,用凝胶图像分析系统分析读取条带面积,宽度和灰度值,做统计分析。注意事项:1制备聚丙烯酰胺时应注意排除气泡。2 .明胶酶谱的活性受钙离子,锌离子,和PH值等因素的影响,因此缓冲液配制应严格准确,尽量用超纯水

8、,孵育温度也掌握好。3 .用大梳子4 .孵育液的PH最好在7.5-7.6,复性的TRITON时间长了会有絮状物,所以实验时尽量使用新鲜配置的。5,孵育的37度不要在C02培养箱中,因为会改变孵育液的PH值,在普通孵箱即可。6,明胶要4度保存,配好后1周内使用凝胶制备:1 .玻璃板对齐后放入夹中,垂直卡紧,加满水检漏。2 .配10%分离胶,APS和TEMED作用为促凝,最后灌胶前加。若板不漏水,则将水倒出,并用吸水纸洗净后灌胶,灌至大约3/4处,上面加满水压平。3 .配浓缩胶,同样地,APS和TEMED最后力口,分离胶灌入约30min后观察小烧杯中剩余分离胶是否已凝,同时仔细观察可见玻板水和胶间有一条折线,说明胶已凝固。4 .将上面的水倒去,吸水纸洗净,灌入浓缩胶,灌满,注意一定不要有气泡,然后将梳子插入,注意保持水平,约30min后凝固可用。5 .拔梳子在电泳缓冲液中拔,加样孔用小针筒冲洗干净再上样,注意上样时勿使样品逸至邻孔,样品混匀时要轻,不要产生气泡,否则加样时易导致逸出而使结果不准确。

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索

当前位置:首页 > 应用文档 > 工作总结

copyright@ 2008-2022 001doc.com网站版权所有   

经营许可证编号:宁ICP备2022001085号

本站为文档C2C交易模式,即用户上传的文档直接被用户下载,本站只是中间服务平台,本站所有文档下载所得的收益归上传人(含作者)所有,必要时第一文库网拥有上传用户文档的转载和下载权。第一文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对上载内容本身不做任何修改或编辑。若文档所含内容侵犯了您的版权或隐私,请立即通知第一文库网,我们立即给予删除!



客服