TSHRH031-2020设计技术规范.docx

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1、化妆品紧致、抗皱功效测试-体外成纤维细胞I型胶原蛋白含量测定1范围本文件规定了人真皮成纤维细胞分泌的I型胶原蛋白含量测定试验的基本技术要求。本文件提供一种人真皮成纤维细胞中I型胶原蛋白含量的检测方法，本文件可作为化妆品原料及成品紧致、抗皱功效称谓的证据支持之一。2规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的的条款。其中，注日期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB/T66822008分析实验室用水规格和试验方法。SN/T38992014化妆品体外替代试验良好细胞培养和样品制备规范。3术语、定义

2、下列术语和定义适用于本文件。3.1成纤维细胞fibroblast普遍存在于结缔组织中的一种中胚层来源的细胞。分泌前胶原、纤连蛋白和胶原酶等细胞外基质，伤口愈合过程中可迁移到伤口进行增殖。3.2光密度opticaldensity,OD物质在溶液中吸收特定波长光线强弱的参数。光密度值与光吸收物质在溶液中的浓度成相关性（采用竞争法原理的ELISA试剂盒，光密度值与光吸收物质在溶液中的浓度呈负相关性，采用夹心法原理的EL1SA试剂盒，光密度值与光吸收物质在溶液中的浓度呈正相关性）。3.3酶联免疫吸附测定enzyme-linkedimmunosorbentassay,ELISA将抗原、抗体的特异性反应与

3、酶对底物的高效催化作用相结合起来的高灵敏度分析技术。基本设计是用酶（如辣根过氧化物酶、碱性磷酸酶等）标记抗体，该酶标抗体可与待测的抗原或抗体免疫吸附结合，酶催化的呈色反应可以间接反映抗原的量。4原理I型胶原蛋白是真皮细胞外基质的主要成分之一，由真皮成纤维细胞在胞内合成I型前胶原，分泌至胞外，在末端前胶原肽酶的作用下，端肽分离后，聚合形成胶原纤维。人真皮成纤维细胞可以作为研究化妆品提升I型胶原含量的细胞模型，通过测定受试物给药后，空白对照与受试物给药后，I型胶原蛋白含量的上调率，评价受试物在促进胶原蛋白合成方面是否具有功效。I型胶原蛋白含量的测定采用酶联免疫方法（ELTSA）,具体原理为：I型胶

4、原与包被在酶标板上的胶原蛋白抗体特异性结合后，与带有底物标记的抗I型胶原抗体结合，底物被酶催化后，生成有色产物，I型胶原蛋白含量与有色产物颜色的深浅呈正相关。用酶标仪450nm波长下测定光密度（0D值），计算I型胶原蛋白含量。5仪器及设备5.15.1调节移液枪：1000吐、200此、50吐、10piLo5.25.2CO2培养箱:37,湿化、5%O）2/空气。5.35.3酶标仪：配置450nm滤光片。5.45.4超净工作台。5.55.5微量振荡器。5.65.6分析天平：精度0.1mgo5.75.7恒温培养箱。5.85.8细胞计数仪或血球计数板。5.95.9超低温冰箱（-80）。5.105.10倒

5、置显微镜。5.115.11低速离心机。6主要试剂及耗材除另有规定外，所有试剂应为分析纯，试验用水应按GB/T6682三级用水的要求进行制备。与细胞培养相关试剂、耗材应作无菌处理。6.1 细胞6.1.1 宜选用人真皮成纤维细胞；若培养条件能满足细胞的特殊需要，其他成纤维细胞或细胞系也可用于本试验；但应证明其等同性。6.1.2 应定期检测细胞，确保细胞无支原体污染，只有无污染才能被使用。6.2 细胞培养涉及试剂及耗材低糖DMEM培养基（首选商品化的液体培养基或干粉，也可自行配置），10%胎牛血清（FBS）,也可选择新生牛血清，胰蛋白酶/EDTA溶液（0.25%胰酶溶液与0.02mol/LEDTA溶

6、液1:1混匀），磷酸盐缓冲液（PBS）,细胞培养瓶。6.3 检测96孔细胞培养板，人I型胶原酶联免疫试剂盒。7试验方法7.1 细胞准备来自冷冻保存的细胞培养物以一个合适的密度接种到培养基，并在检测前至少传代一次，例如选用P7代细胞，具体使用代次，可根据实验室实际进行调整。细胞应以合适的密度接种到培养基中用于试验，细胞接种密度应保证在接种24h后，融合度达到45%60吼7.2 受试物准备7.2.1 除非有稳定性数据证明储备液可接受，否则受试物必须在使用前新鲜配置直接使用。7.2.2 水中溶解度受限的受试物应当溶解在适当的溶剂中，溶剂体积应当在所有培养物中保持一致，即在空白对照和受试物中保持一致，

7、并且无细胞毒性。受试物浓度的选择应避免出现沉淀和溶液呈现云雾状。7.2.3 宜使用二甲基亚飒(DMSO)和无水乙醇为溶剂，其他低细胞毒性的溶剂也可使用。在使用溶剂前，应仔细评估它们的特殊性质，例如：是否与受试物发生反应，或溶液中的化学稳定性。7.2.4 2.4可使用涡旋混合/或超声处理和/或加热到适当温度等方法辅助溶解，除非这些操作会影响到受试物的稳定性。8试验条件7.2.5 3.1受试物浓度应通过细胞毒性检测确定受试物的浓度范围。例如选择细胞活力于0%,且细胞形态与对照组无明显差异的浓度。8.3.2 阳性对照每一次试验都应同时使用阳性对照进行试验。推荐阳性对照物，如100ng/mLTGFpl

8、,参考文献，配置方法见附录Bo具体给药浓度可根据试验室培养细胞特性进行调整。据历史资料，试验可接受的标准为：阳性对照1型胶原蛋白含量上调靶20%。9试验步骤9.4.1 细胞消化、接种人真皮成纤维细胞采用胰蛋白酶/EDTA,具体消化浓度及用量需根据实验室细胞特性确定，建议：浓度为0.25%,T25培养瓶用量为1mL,T75培养瓶，用量3mL0倒置显微镜下观察，至大部分细胞变圆并处于悬浮状态时，加入约胰酶体积23倍的含血清的DMEM培养基终止消化，并收集至离心管中,800/01门离心6加5转速及离心时间可根据实验室细胞特性进行确定。离心结束后，弃掉上清液，向离心管中加入一定体积的细胞培养基，弯头吸

9、管吹打混匀细胞，细胞计数仪或血球计数板进行计数。用细胞培养基稀释细胞至接种密度后(接种后24h融合度达到45%60%),接种至96孔板中，每孔液量为200pLo接种结束后，放置于C02培养箱中培养24h2h。9.4.2 给药弃掉96孔板中的培养基，开展给药操作。受试物孔中加入含有受试物的培养基，阳性对照孔中加入含有阳性对照的培养基，空白/溶剂对照孔中加入正常的细胞培养基，每孔200gLo给药完毕后将96孔板放置在C02培养箱中培养24h2ho给药培养时间也可根据细胞特性，自行摸索I型胶原分泌的峰值时间进行调整。9.4.3 细胞上清收集孵育培养结束后，每孔收集200HL细胞培养上清液于1.5mL

10、无菌离心管中，置于-80C超低温冰箱冷冻保存。9.4.4 ELISA检测ELISA检测需根据人I型胶原酶联免疫试剂盒的使用说明书进行检测。在正式检测前，需设定稀释比例，进行预实验，摸索确定ELISA检测实验组的稀释比例，以保证检测数值落在标准曲线范围内。10结果计算10.1 I型胶原蛋白含量计算推荐使用专业制作曲线软件，以标准品的浓度为纵坐标，。450值为横坐标，制作标准曲线，根据样本的。50值，查出相应的浓度。或用标准品的浓度与。450值计算出标准曲线的回归方程式，将样本的。50值代入方程式，计算样本的I型胶原蛋白含量。最终取各组3个复孔的平均值作为最终的I型胶原蛋白结果。10.2 I型胶原

11、蛋白上调率计算公式上调率(%)=(T/C-l)X100%(1)式中：T受试物I型胶原蛋白含量平均值；C空白/溶剂对照I型胶原蛋白含量平均值。11试验有效性验证11.1每批次试验均须设置阳性对照，要求每批次试验，阳性对照均能检出I型胶原蛋白含量上调的效果，且与空白/溶剂对照相比，阳性对照I型胶原蛋白含量上调率需N20%,则认为试验系统有效。11.2统计酶标仪测得的各组复孔间光密度的标准差(StandardDeviation,SD),并计算变异系数(CoefficientofVariation,C.V),。”值、20%,则认为试验平行性有效。12结果报告12.1I型胶原蛋白的含量应表述为：平均值土

12、标准差(SD)o12.2评价受试物促进I型胶原蛋白合成的能力，需受试物与空白/溶剂对照的I型胶原蛋白含量具有显著性差异(A0.05)o12.3对于受试物促进I型胶原蛋白合成的表述，应包含受试浓度。13结果相关性解读在试验满足有效性验证的基础上，受试物与空白/溶剂对照相比，I型胶原蛋白的含量上调，且具有显著性差异(R0.05),说明受试物在该受试浓度下，具有促进I型胶原蛋白合成的能力，可作为紧致、抗皱类化妆品原料称谓的证据支持之一。附录A（资料性附录）正常人真皮成纤维细胞20X物镜下照片图A.1正常人真皮成纤维细胞典型培养图片B.1培养基需含有下列成分10%14mmol/L100lU/mL100

13、pg/mLB.250rg/mLTGFp12pg40pL附录B（资料性）（在DMEM中的最终浓度）FBS/NBCS【谷氨酰胺青霉素链霉素贮备液TGFP110mM柠檬酸0.22pm滤器过滤除菌，-20保存，避免反复冻存8. 3100ng/mLTGFp1工作液2此TGFpl贮存液998吐培养基B.4操作方法现用现配。参考文献1 K.Gelse,E.Poschl,T.Aigner.Collagensstructure,function,andbiosynthesis.AdvancedDrugDeliveryReviews55(2003)1531-1546.2 Young-JinJe,Dae-KyoungChoi,Kyung-CheolSohn.InhibitoryroleofIdlonTGF-b-inducedcollagenexpressioninhumandermalfibroblasts.BiochemicalandBiophysicalResearchCommunications444(2014)81-85.3Coecke,SBallla,MBowe,G,Guidanceongoodcellculturepractice,AreportofthesecondECVAMtaskforceongoodcellpractice,2005.